Изокалорическая смесь что это: Энтеральное питание в сухом и жидком виде | Купить по оптовой цене в «АМС-Мед» — Оформление в психоневрологический интернат, дом престарелых

Изокалорическая смесь что это: Энтеральное питание в сухом и жидком виде | Купить по оптовой цене в «АМС-Мед»

Содержание

Нутризон эдванст нутридринк смесь сухая 322 гр

Бренд НУТРИДРИНК (Nutridrink)

Нутризон Эдванст Нутридринк сухая смесь

СПЕЦИАЛИЗИРОВАННАЯ СУХАЯ СМЕСЬ ДЛЯ ДИЕТИЧЕСКОГО ЛЕЧЕБНОГО ПИТАНИЯ,

ИМЕЕТ 3 СТЕПЕНИ РАЗВЕДЕНИЯ (ГИПЕР-, ГИПО- И ИЗОКАЛОРИЧЕСКАЯ) ДЛЯ УДОВЛЕТВОРЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКИХ ПОТРЕБНОСТЕЙ ПАЦИЕНТОВ В БЕЛКЕ И ЭНЕРГИИ В ПЕРИОД ЛЕЧЕНИЯ И РЕАБИЛИТАЦИИ

Для энтерального питания пациентов, которые могут питаться самостоятельно в период восстановления после инсульта и других критических состояний, а также в период подготовки и восстановления после оперативных вмешательств.•

Сбалансированная питательная смесь имеет 2 степени разведения (гипер- и изокалорическая) для удовлетворения индивидуальных потребностей пациентов.Полноценный витаминно-минеральный состав, обогащение каротиноидами.

• Не содержит глютен, пищевые волокна и генетически модифицированные компоненты.

• Может употребляться в качестве напитка или с помощью зонда.

ОСНОВНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ

НУТРИДРИНК СУХАЯ СМЕСЬ, ПИЩЕВАЯ ЦЕННОСТЬ НА 100 Г И 100 МЛ СМЕСИ В СТАНДАРТНОМ РАЗВЕДЕНИИ

• Энергетическая ценность 1943/463 — 420/100 кДж/ккал

• Жиры (35 % энергии)18,2 — 3,9 г

• из которых

• насыщенные 8,5 — 1,8 г

• Углеводы (49% энергии) 56,6 — 12,2 г

• из которых

• сахара 8,7 — 1,9 г

• лактоза 0,14 — 0,030 г

• Пищевые волокна (0% энергии) —

• Белки (16 % энергии) 18,2 — 3,9 г

• Соль 1,2 — 0,26 г

МИНЕРАЛЬНЫЕ ВЕЩЕСТВА

• Натрий (Na) 472 — 102 мг

• Калий (K) 706 — 153 мг

• Хлориды (Cl) 578 — 125 мг

• Кальций (Ca) 370 — 80,1 мг

• Фосфор (P) 290 — 62,8 мг

• Магний (Mg) 69,3 — 15,0 мг

• Железо (Fe) 7,38 — 1,59 мг

• Цинк (Zn) 5,54 — 1,20 мг

• Медь (Cu) 0,83 — 0,18 мг

• Марганец (Mn) 0,93 — 0,20 мг

• Фтор (F) 0,48 — 0,10 мг

• Молибден (Mo) 48,6 — 10,5 мкг

• Селен (Se) 26,4 — 5,70 мкг

• Хром (Cr) 25,7 — 5,56 мкг

• Йод (I) 63,1 — 13,6 мкг

• Другие

• Каротиноиды 0,74 — 0,16 мг

• Холин 165 — 35,6 мг

• Осмолярность 320 м0см/л

ВИТАМИНЫ

• Витамин А 381 — 82,4 мкг-RE

• Витамин D 6,01 — 1,30 мкг

• Витамин Е 5,94 — 1,28 мг-α TE/ET

• Витамин К 24,45 — 5,28 мкг

• Тиамин (B1) 0,69 — 0,15 мг

• Рибофлавин 0,74 — 0,16 мг

• Ниацин (B3) 4,26 — 0,92 мкг

• 8,30 — 1,79 мг NE/EN

• Пантотеновая кислота 2,45 — 0,53 мг

• Витамин В6 0,79 — 0,17 мг

• Фолиевая кислота 123 — 26,6 мкг

• Витамин B12 1,02 — 0,22 мкг

• Биотин 19,7 — 4,27 мкг

• Витамин С 59,5 — 12,9 мг

Питание при COVID-19 | partners

Новая коронавирусная инфекция, ставшая причиной глобальной пандемии 2019 года, продолжает вызывать активный интерес международного научного и медицинского сообщества. Широко изучаются как особенности патогенеза этого заболевания, так и возможные методы терапии, немедикаментозной поддержки и реабилитации тяжелых пациентов.

Вирус SARS-CoV-2 поражает все органы и системы организма. Известно, что наиболее распространенными клиническими проявлениями являются лихорадка, кашель и одышка. Однако до 10% пациентов обнаруживает и желудочно-кишечные симптомы, включая диарею, тошноту и рвоту. Поражение новой инфекцией пищеварительного транспортного конвейера, через который организм получает жизненно необходимые нутриенты, энергетические, пластические, регуляторные вещества, заставляет самым внимательным образом отнестись к аспекту питания при COVID-19. На сегодняшний день необходимость этапной нутритивной поддержки, которая будет сопровождать пациентов с коронавирусной инфекцией от отделения реанимации и интенсивной терапии до общей палаты и даже до домашней реабилитации, уже не вызывает сомнений.

Воздействие SARS-CoV-2 на желудочно-кишечный тракт

Проникая через слизистую оболочку носа, гортани и бронхиального дерева в периферическую кровь, вирус SARS-CoV-2 поражает целевые органы: легкие, пищеварительный тракт, сердце, почки, клетки которых экспрессируют ангиотензинпревращающий фермент 2 (АПФ-2, ACE2). Большой S-белок коронавируса связывается с ACE2 на инфицированных клетках, в результате чего комплекс SARS-CoV-2/ACE2 беспрепятственно проникает в цитоплазму. После высвобождения вирусной РНК, с нее транслируются два полипротеина, структурные протеины, и начинается репликация вирусного генома.

Альвеолярные эпителиальные клетки и эпителиальные клети тонкого кишечника, развивающиеся из одного эмбрионального листка, отличатся высоким уровнем экспрессии ACE2. Это объясняет не только причину преимущественного поражения нижних дыхательных путей при COVID-19, но и довольно высокую частоту возникновения абдоминального и диспептического синдромов.

Уязвимость желудочно-кишечного тракта также может быть связана с тем, что коронавирус нового типа использует в качестве входных ворот в слизистые не только дыхательных путей, но и пищеварительной системы. Последние исследования показывают, что вирус попадает в организм и выделяется из него через ЖКТ. Согласно некоторым данным, у больных с гастроэнтеральными симптомами РНК SARS-CoV-2 выявлялась в кале более чем в 52% случаев, и у пациентов без гастроэнтеральных жалоб – в 39%.

На данный момент предполагается, что поражение пищеварительной системы вирусом COVID-19 может быть обусловлено сразу несколькими причинами, включая:

рецептор-опосредованное проникновение вируса в клетки;
индукцию воспаления и изменение проницаемости слизистых оболочек;
влияние на состав микробиоты кишечника.

Немаловажно, что нарушение функций ЖКТ утяжеляет общее состояние и дополнительно способствует прогрессированию респираторных симптомов, что в свою очередь усугубляет патологические процессы в кишечнике.

Гастроэнтеральные симптомы при COVID-19

Результаты обследования группы больных с COVID-19, имевших гастроэнтеральные симптомы, показали, что самой частой жалобой была диарея (24,2%), за которой следовала анорексия (17,9%) и тошнота (17,9%). Авторы исследования, тем не менее, обратили внимание, что чаще всего диарея развивалась уже во время госпитализации и потенциально могла быть обусловлена применением антибиотиков.

Интересно, что наличие гастроэнтеральных симптомов достоверно коррелирует с тяжестью состояния пациентов. Так, при оценке течения заболевания 74 больных с COVID-19, имевших гастроэнтеральные жалобы, было показано, что тяжелые и критические формы встречались достоверно чаще (22,97% и 31,08% соответственно), чем у пациентов, у которых эти симптомы отсутствовали (8,14% и 20,45% соответственно). У больных с COVID-19 с желудочно-кишечными симптомами также чаще отмечались лихорадка, общая слабость, одышка и головная боль.

Таким образом, наличие гастроэнтеральных жалоб можно считать настораживающим признаком. Пациенты их предъявляющие требуют повышенного внимания и назначения дополнительных исследований на предмет изучения желудочно-кишечных функций. По некоторым данным, из-за отсутствия аппетита, тошноты и других гастроэнтеральных симптомов пациенты с COVID-19 могут терять 5-10 кг веса, и из-за резкого дефицита нутриентов, в первую очередь протеинов, быстро восстановить функции иммунной, нейроэндокринной и собственно пищеварительной системы проблематично.

С целью восполнения недостающих жизненно-важных веществ и укрепления местного и общего иммунитета целесообразно назначение адекватного лечебно-профилактического питания, содержащего сбалансированное количество легкодоступного протеина, триглицеридов, витаминов и микроэлементов.

Этапная нутритивная поддержка при COVID-19

Коронавирусная инфекция в большинстве (81%) случаев протекает в нетяжелой или неосложненной форме. Однако у 14% пациентов развиваются серьезные состояния, которые требуют дыхательной поддержки, и в 5% случаев требуется лечение в отделении реанимации и интенсивной терапии.

Нутритивная поддержка у тяжелых пациентов с выраженной интоксикацией, резким снижением аппетита, нарушением функции внешнего дыхания, дисфагией и другими симптомами, начинается непосредственно в отделении реанимации. Больному на фоне терапии может назначаться энтеральное питание с использованием метаболически направленных смесей, при выборе которых необходимо учитывать степень скомпрометированности различных органов и систем.

После компенсации патологического процесса пациент переводится на стандартные сбалансированные смеси, а потом на щадящий вариант диеты, в которой используется принцип химического, механического и температурного щажения при приготовлении и подаче блюд. Нутритивная поддержка сипинговыми смесями рассматривается и как необходимая мера при домашней реабилитации после перенесенной инфекции больных, особенно пожилого и старческого возраста.

Питание у пациентов с COVID-19 на ИВЛ

Искусственная вентиляция легких (ИВЛ), полностью или частично замещающая спонтанное дыхание, –одна из самых частых мер в терапии дыхательной недостаточности у пациентов с COVID-19 в тяжелом состоянии.

Современные клинические рекомендации предписывают раннее начало энтерального питания при отсутствии критических изменений гемодинамики – в течение 24-48 часов после поступления в ОРИТ. Доказано, что ранняя нутритивная поддержка способствует снижению уровня смертности у пациентов в критическом состоянии, находящихся на ИВЛ, а также уменьшает число инфекционных осложнений и продолжительность пребывания в стационаре.

Энтеральный путь введения без сомнения является наиболее физиологичным, и до тех пор, пока не будут использованы все стратегии для оптимизации энтерального питания, парентеральный метод применять не стоит. Тем не менее, возможности использования энтерального питания у тяжелых пациентов с COVID-19 зачастую ограничены в связи с их положение на животе. В таком случае питание сначала вводится парентерально, но по мере возможности сразу сменяется зондовым.

Зондовое питание пациентов с COVID-19

Для определения потребности в калориях у пациентов на ИВЛ сегодня используются непрямая калориметрия или различные прогностические формулы. Необходимо учитывать, что для этой категории больных состав и качество получаемых нутриентов имеют огромное значение. Учитывая уязвимое и часто скомпрометированное состояние желудочно-кишечного тракта при COVID-19, требуемые калории должны поступать в организм в наиболее легкодоступном виде, и их усвоение не должно требовать дополнительных энергозатрат. Количество поступающего протеина должно компенсировать потерю белка при катаболических процессах: существующие клинические руководства предписывают начинать с 1,2 – 2 г/кг/сутки.

Оптимальные продукты для зондового питания:

Nestle Peptamen. Смесь на основе сывороточного белка облегчает усвоение всех необходимых питательных веществ у пациентов с нарушенной функцией ЖКТ. Продукт с содержанием калорий 1000 ккал/л и белка 40 г/л полностью удовлетворяет энергетические потребности организма. Смесь хорошо переносится за счет гидролизованного белка 100% молочной сыворотки, не содержит лактозу. Легкодоступным источником энергии являются среднецепочечные триглицериды (70% жирового компонента смеси), усваивание которых проходит без участия ферментов двенадцатиперстной кишки. Высокий уровень цистеина помогает контролировать воспалительный процесс путем нейтрализации свободных радикалов.
Nestle Resource Optimum. Изокалорическая полноценная сбалансированная смесь для профилактики и лечения недостаточности питания отличается очень хорошей усвояемостью даже у тяжелых пациентов.
Сочетание казеинов и сывороточных белков обеспечивает полный набор эссенциальных аминокислот. Продукт содержит высокие концентрации омега-6 и омега-3 жирных кислот (в соотношении 4:1), а также СЦТ (25%), рапсовое и кукурузные масла, широкий набор витаминов и микроэлементов.
Nestle Impact. Этот продукт занимает первое место на мировом рынке иммунного питания. Эффективность Нестле Импакт клинически доказана на основе мета-анализа результатов лечения более 2000 пациентов с различной хирургической патологией в ведущих мировых центрах. Полноценная сбалансированная смесь обогащена аргинином, омега-3-жирными кислотами и нуклеотидами, а также содержит жизненно необходимые витамины и микроэлементы.

Немаловажно, что все указанные смеси подходят не только для зондового, но и для перорального питания.

Питание после отлучения от ИВЛ

После того, как пациент снимается с искусственной вентиляции легких, рекомендуется провести логопедическую оценку его способности к глотанию, а, следовательно, к самостоятельному пероральному питанию.

Специалист должен определить тип подходящей больному консистенции пищи и необходимость использования загустителей для введения жидкостей. Перспективным продуктом является универсальный загуститель для еды и напитков Nestle Resource Thicken Up Clear, который используется для диагностики дисфагии, оценки степени выраженности нарушений и облегчения питания для пациентов с дисфагией.

Питание при неинвазивной вентиляции и дыхательной поддержке

Пациентам с неинвазивной дыхательной поддержкой для обеспечения клинического выздоровления также необходима метаболическая стабильность и адекватный статус питания. В этих случаях важно оценивать адекватность перорального приема пищи индивидуальным нуждам больных и при необходимости использовать сбалансированные сипинговые смеси для нутритивной поддержки.

Дополнительное сипинговое питание Nestle Resource с повышенным содержанием белка (9г/100 мл) и полным набором эссенциальных микро- и макронутриентов поддерживает оптимальную скорость восстановления иммунной системы и регенерации тканей после инфекционного процесса. Широкая линейка продуктов – Nestle Resource 2.0+fibre, Resource 2.0, Resource Protein, Resource diabet plus – дает возможность подобрать смесь под индивидуальные энергетические и питательные нужды и учесть потенциальное наличие коморбидных патологий, например, диабета или нарушения толерантности к глюкозе.

Питание при COVID-19 после ОРИТ

По мере восстановления пациента, после купирования основных гастроэнтеральных симптомов, диареи, тошноты, болей, можно постепенно переводить его на щадящую диету, предпочтительно не отказываясь и от поддержки сипинговым питанием Resource Nestle. При комплектовании индивидуального рациона следует учитывать энерготраты больного, его состояние и коэффициент активности.

Основные принципы диеты у пациентов с COVID-19

При переводе на щадящий вариант диеты необходимо сохранить высокую квоту употребления полноценного суточного белка (1,5 стакана молока или 30 г сыра, или равнозначное количество других молочных продуктов).
Рекомендуется ограничить прием жиров до 30% от суточной потребности. Основной упор должен быть сделан на употребление ПНЖК омега-3 с целью ускорения восстановления структуры слизистых оболочек и профилактики микротромбозов.
Стоит уменьшить прием соли и сахара до 5 г в сутки.
В рацион необходимо включить овощи и фрукты (сначала в виде отваров, компотов, пюре, продуктов детского питания), а также бобовых и цельнозерновых продуктов, содержащих пищевые волокна, витамины группы В.
С учетом длительного пребывания в помещении рекомендовано ежедневное употребление витамина D в дозе 10 мкг, минералов цинка, железа, селена.

Профилактическая нутритивная поддержка

Эпидемические исследования, проведенные сотрудниками института питания РАМН в различных регионах России, показали, что до 80% населения нашей страны испытывают дефицит тех или иных микро- или макронутриентов. Безусловно, это не может не сказываться на состоянии иммунитета, рисках инфекционных заболеваний и сроках реабилитации после них.

Для восполнения имеющихся дефицитов, а также для восстановления нарушенной под действием экопатогенов и стресса функции адаптационных регулирующих механизмов организма, требуется повышенная обеспеченность эссенциальными нутриентами. Этого, однако, невозможно достичь только за счет стандартных рационов питания, не превышая их разумных объемов. Ключом к решению этого вопроса, по мнению специалистов, является регулярное включение в рацион специализированных функциональных пищевых продуктов и функциональных напитков, примером которых являются, в частности, сипинговые смеси Resource Nestle.

В заключение

Нарушение пищеварения – один из самых распространенных симптомов нового коронавируса, наряду с респираторными проявлениями. Пациентам с COVID-19 на всех стадиях лечения необходимо обеспечить полноценное питание, которое не только восполнит дефицит жизненно необходимых нутриентов и станет полноценным источником энергии для восстановления, но и будет максимально безопасным и легко усвояемым для скомпрометированной пищеварительной системы. Продукты Nestle для зондового и перорального питания, подходящие для каждого этапа терапии – от ИВЛ в условиях реанимации до амбулаторной реабилитации, оптимально способствует компенсации нужд пациентов с коронавирусной инфекцией. Специализированные смеси обладают сбалансированным составом аминокислот, жиров, витаминов и микроэлементов и усваиваются при минимальных ферментных и энергетических тратах.

Источники:

Питание при COVID-19. Лекция для специалистов. Сергеев Валерий Николаевич, д.м.н, главный научный сотрудник одела соматической реабилитации, репродуктивного здоровья и активного долголетия ФГБУ «НМИЦ РК» Минздрава России. https://www.youtube.com/watch?v=6D0BZzuY_-A&list=PLd6NR3OWlpzz4HOa1uSxXZOb94mg9PZ76&index=15
Питание после Covid-пневмонии. Интервью с профессором Сергеевым В.Н. Школа жизни пациента после Covid. https://www.youtube.com/watch?v=vDRRzQNcxl8&list=PLd6NR3OWlpzz4HOa1uSxXZOb94mg9PZ76&index=19

Изокалорийная манипуляция макронутриентами в рамках диеты с высоким содержанием углеводов/умеренным содержанием жиров оказывает уникальное влияние на печеночный липогенез, стеатоз и повреждение печени

[1] Samocha-Bonet D, Dixit VD, Kahn CR, Leibel RL, Lin X, Nieuwdorp M , и другие. Метаболически здоровое и нездоровое ожирение — отчет Stock Conference 2013. Obes Rev. 2014; 15: 697–708. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[2] Browning JD, Szczepaniak LS, Dobbins R, Nuremberg P, Horton JD, Cohen JC, et al. Распространенность стеатоза печени среди городского населения США: влияние этнической принадлежности. Гепатология. 2004; 40: 1387–9.5. [PubMed] [Google Scholar]

[3] Тетри Л.Х., Басараноглу М., Брант Э.М., Ериан Л.М., Нойшвандер-Тетри Б.А. Тяжелая НАЖБП с некровоспалительными изменениями в печени у мышей, получавших трансжиры и эквивалент кукурузного сиропа с высоким содержанием фруктозы. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2008; 295:G987–95. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[4] Kohli R, Kirby M, Xanthakos SA, Softic S, Feldstein AE, Saxena V, et al. Диета с высоким содержанием фруктозы и трансжиров со средней длиной цепи вызывает фиброз печени и повышает уровень коэнзима Q9 в плазме.в новой мышиной модели ожирения и неалкогольного стеатогепатита. Гепатология. 2010 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[5] Charlton M, Krishnan A, Viker K, Sanderson S, Cazanave S, McConico A, et al. Мыши, питающиеся фаст-фудом: новая модель НАСГ у мелких животных с вздутием живота, прогрессирующим фиброзом и высокой физиологической точностью состояния человека. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2011; 301:G825–34. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[6] Savard C, Tartaglione EV, Kuver R, Haigh WG, Farrell GC, Subramanian S, et al. Синергетическое взаимодействие пищевого холестерина и пищевого жира при индуцировании экспериментального стеатогепатита. Гепатология. 2013; 57: 81–92. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[7] Mells JE, Fu PP, Kumar P, Smith T, Karpen SJ, Anania FA. Насыщенные жиры и холестерин имеют решающее значение для индукции метаболического синдрома у мышей с выраженным неалкогольным стеатогепатитом. Дж. Нутр Биохим. 2015;26:285–92. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[8] Yao ZM, Vance DE. Активный синтез фосфатидилхолина необходим для секреции липопротеинов очень низкой плотности гепатоцитами крысы. Дж. Биол. Хим. 1988;263:2998–3004. [PubMed] [Google Scholar]

[9] Vance JE, Vance DE. Роль биосинтеза фосфатидилхолина в секреции липопротеинов гепатоцитами. Может J Biochem Cell Biol. 1985; 63: 870–81. [PubMed] [Google Scholar]

[10] Леклерк И.А., Фаррелл Г.К., Филд Дж., Белл Д.Р., Гонсалес Ф.Дж., Робертсон Г.Р. CYP2E1 и CYP4A как микросомальные катализаторы перекисей липидов при неалкогольном стеатогепатите мышей. Джей Клин Инвест. 2000; 105:1067–75. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[11] Rizki G, Arnaboldi L, Gabrielli B, Yan J, Lee GS, Ng RK, et al. У мышей, получавших диету с дефицитом липогенного метионина-холина, развивается гиперметаболизм, совпадающий с печеночной супрессией SCD-1. J липидный рез. 2006;47:2280–90. [PubMed] [Google Scholar]

[12] Pickens MK, Yan JS, Ng RK, Ogata H, Grenert JP, Beyson C, et al. Пищевая сахароза необходима для развития повреждения печени в модели MCD стеатогепатита. J липидный рез. 2009;50:2072–82. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[13] Пикенс М.К., Огата Х., Сун Р.К., Гренерт Д.П., Махер Д.Дж. Диетическая фруктоза усугубляет гепатоцеллюлярное повреждение, когда она включена в диету с дефицитом метионина-холина. Печень инт. 2010 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[14] Kleiner DE, Brunt EM, Van Natta M, Behling C, Contos MJ, Cummings OW, et al. Разработка и валидация гистологической системы оценки неалкогольной жировой болезни печени. Гепатология. 2005;41:1313–21. [PubMed] [Google Scholar]

[15] Лакнер С., Гогг-Камерер М., Затлукал К., Штумптнер С., Брант Э.М., Денк Х. Раздутые гепатоциты при стеатогепатите: значение иммуногистохимии кератина для диагностики. Журнал гепатологии. 2008;48:821–8. [PubMed] [Академия Google]

[16] Фолч Дж., Лиз М., Слоан Стэнли Г.Х. Простой метод выделения и очистки общих липидов из тканей животных. Дж. Биол. Хим. 1957; 226: 497–509. [PubMed] [Google Scholar]

[17] Lee GS, Yan JS, Ng RK, Kakar S, Maher JJ. Полиненасыщенные жиры в рационе с дефицитом метионина-холина влияют на воспаление печени, но не на гепатоцеллюлярное повреждение. J липидный рез. 2007; 48: 1885–96. [PubMed] [Google Scholar]

[18] Hellerstein MK, Christiansen M, Kaempfer S, Kletke C, Wu K, Reid JS, et al. Измерение печеночного липогенеза de novo у людей с использованием стабильных изотопов. Джей Клин Инвест. 1991;87:1841–52. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[19] Hellerstein MK, Kletke C, Kaempfer S, Wu K, Shackleton CH. Использование массовых распределений изотопомеров в секретируемых липидах для отбора проб липогенного пула ацетил-КоА in vivo у людей. Am J Physiol. 1991; 261:E479–86. [PubMed] [Google Scholar]

[20] Hellerstein MK, Neese RA. Анализ массового распределения изотопомеров за восемь лет: теоретические, аналитические и экспериментальные соображения. Am J Physiol. 1999; 276:E1146–70. [PubMed] [Академия Google]

[21] Джонс П.Дж. Отслеживание липогенеза у людей с использованием дейтерированной воды. Может J Physiol Pharmacol. 1996; 74: 755–60. [PubMed] [Google Scholar]

[22] Lee WN, Bassilian S, Ajie HO, Schoeller DA, Edmond J, Bergner EA, et al. Измерение in vivo жирных кислот и синтеза холестерина с использованием D2O и анализа массы изотопомеров. Am J Physiol. 1994; 266:E699–708. [PubMed] [Google Scholar]

[23] Ведала А., Ван В., Низ Р.А., Кристиансен М.П., Хеллерштейн М.К. Отсроченный вклад секреторного пути в триглицериды ЛПОНП из плазмы NEFA, диеты и липогенеза de novo у людей. J липидный рез. 2006; 47: 2562–74. [PubMed] [Академия Google]

[24] Peter A, Cegan A, Wagner S, Lehmann R, Stefan N, Konigsrainer A, et al. Липидный состав печени и экспрессия мРНК стеароил-кофермента А-десатуразы 1 можно оценить по соотношению жирных кислот ЛПОНП в плазме. Клин Хим. 2009;55:2113–20. [PubMed] [Google Scholar]

[25] Flowers MT. Индекс десатурации дельта9 жирных кислот как предиктор метаболических заболеваний. Клин Хим. 2009;55:2071–3. [PubMed] [Google Scholar]

[26] Мацузава Н. , Такамура Т., Курита С., Мису Х., Ота Т., Андо Х. и др. Индуцированный липидами окислительный стресс вызывает стеатогепатит у мышей, получавших атерогенную диету. Гепатология. 2007;46:1392–403. [PubMed] [Google Scholar]

[27] Monetti M, Levin MC, Watt MJ, Sajan MP, Marmor S, Hubbard BK, et al. Диссоциация стеатоза печени и резистентности к инсулину у мышей со сверхэкспрессией DGAT в печени. Клеточный метаб. 2007; 6: 69–78. [PubMed] [Google Scholar]

[28] Ishimoto T, Lanaspa MA, Rivard CJ, Roncal-Jimenez CA, Orlicky DJ, Cicerchi C, et al. Диета с высоким содержанием жиров и сахарозы (западная) вызывает стеатогепатит, который зависит от фруктокиназы. Гепатология. 2013; 58:1632–43. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[29] Jiang JX, Chen X, Fukada H, Serizawa N, Devaraj S, Torok NJ. Конечные продукты усиленного гликирования индуцируют фиброгенную активность при неалкогольном стеатогепатите путем модулирования активности фермента, превращающего TNF-альфа, у мышей. Гепатология. 2013; 58:1339–48. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[30] Ouyang X, Cirillo P, Sautin Y, McCall S, Bruchette JL, Diehl AM, et al. Потребление фруктозы как фактор риска неалкогольной жировой болезни печени. J Гепатол. 2008; 48: 993–9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[31] Zelber-Sagi S, Nitzan-Kaluski D, Goldsmith R, Webb M, Blendis L, Halpern Z, et al. Длительное потребление пищи и риск неалкогольной жировой болезни печени (НАЖБП): популяционное исследование. J Гепатол. 2007; 47: 711–7. [PubMed] [Google Scholar]

[32] Abdelmalek MF, Suzuki A, Guy C, Unalp-Arida A, Colvin R, Johnson RJ, et al. Повышенное потребление фруктозы связано с тяжестью фиброза у пациентов с неалкогольной жировой болезнью печени. Гепатология. 2010;51:1961–71. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[33] Tappy L, Le KA. Влияет ли потребление фруктозы на неалкогольную жировую болезнь печени? Клин Рез Гепатол Гастроэнтерол. 2012; 36: 554–60. [PubMed] [Google Scholar]

[34] Чанг М., Ма Дж., Патель К., Бергер С., Лау Дж., Лихтенштейн А.Х. Фруктоза, кукурузный сироп с высоким содержанием фруктозы, сахароза и неалкогольная жировая болезнь печени или показатели здоровья печени: систематический обзор и метаанализ. Am J Clin Nutr. 2014; 100:833–49. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[35] Chiu S, Sievenpiper JL, de Souza RJ, Cozma AI, Mirrahimi A, Carleton AJ, et al. Влияние фруктозы на маркеры неалкогольной жировой болезни печени (НАЖБП): систематический обзор и метаанализ испытаний с контролируемым питанием. Eur J Clin Nutr. 2014;68:416–23. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[36] Kanerva N, Sandboge S, Kaartinen NE, Mannisto S, Eriksson JG. Более высокое потребление фруктозы обратно связано с риском неалкогольной жировой болезни печени у пожилых финнов. Am J Clin Nutr. 2014; 100:1133–8. [PubMed] [Академия Google]

[37] Мур Дж. Б., Ганн П. Дж., Филдинг Б. А. Роль пищевых сахаров и липогенеза de novo при неалкогольной жировой болезни печени. Питательные вещества. 2014; 6: 5679–703. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[38] Rosqvist F, Iggman D, Kullberg J, Cedernaes J, Johansson HE, Larsson A, et al. Перекармливание полиненасыщенными и насыщенными жирами оказывает выраженное влияние на накопление печени и висцерального жира у людей. Диабет. 2014;63:2356–68. [PubMed] [Google Scholar]

[39] Musso G, Gambino R, De Michieli F, Cassader M, Rizzetto M, Durazzo M, et al. Пищевые привычки и их связь с инсулинорезистентностью и постпрандиальной липемией при неалкогольном стеатогепатите. Гепатология. 2003;37:909–16. [PubMed] [Google Scholar]

[40] Musso G, Gambino R, Pacini G, De Michieli F, Cassader M. Длительное, вызванное насыщенными жирами, глюкозозависимое повышение уровня инсулинотропного полипептида связано с дисбалансом адипокинов и повреждением печени при неалкогольном алкоголизме. стеатогепатит: дисрегуляция оси энтероадипоцитов как новая особенность жировой печени. Am J Clin Nutr. 2009; 89: 558–67. [PubMed] [Google Scholar]

[41] Da Silva HE, Arendt BM, Noureldin SA, Therapondos G, Guindi M, Allard JP. Поперечное исследование, оценивающее потребление пищи и физическую активность у канадских пациентов с неалкогольной жировой болезнью печени по сравнению со здоровыми людьми из контрольной группы. Дж. Акад Нутр Диета. 2014; 114:1181–94. [PubMed] [Google Scholar]

[42] Anderson EL, Howe LD, Fraser A, Macdonald-Wallis C, Callaway MP, Sattar N, et al. Потребление энергии в детстве связано с неалкогольной жировой болезнью печени у подростков. Дж Нутр. 2015; 145:983–9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[43] Donnelly KL, Smith CI, Schwarzenberg SJ, Jessurun J, Boldt MD, Parks EJ. Источники жирных кислот, хранящихся в печени и секретируемых липопротеинами, у больных с неалкогольной жировой болезнью печени. Джей Клин Инвест. 2005; 115:1343–51. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[44] Lambert JE, Ramos-Roman MA, Browning JD, Parks EJ. Повышенный липогенез de novo является отличительной чертой лиц с неалкогольной жировой болезнью печени. Гастроэнтерология. 2014; 146:726–35. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[45] Pierce AA, Pickens MK, Siao K, Grenert JP, Maher JJ. Дифференциальная гепатотоксичность пищевого пальмитата и пальмитата, полученного из DNL, в модели стеатогепатита с дефицитом метионина-холина. БМК Гастроэнтерол. 2015;15:72. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[46] Мали Х., Баррейро Ф.Дж., Исомото Х., Бронк С.Ф., Горес Г.Дж. Свободные жирные кислоты повышают чувствительность гепатоцитов к цитотоксичности, опосредованной TRAIL. Кишка. 2007; 56:1124–31. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[47] Holzer RG, Park EJ, Li N, Tran H, Chen M, Choi C, et al. Насыщенные жирные кислоты индуцируют кластеризацию c-Src внутри мембранных субдоменов, что приводит к активации JNK. Клетка. 2011; 147:173–84. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[48] Sharma M, Urano F, Jaeschke A. Cdc42 и Rac1 вносят основной вклад в стимулируемый насыщенными жирными кислотами путь JNK в гепатоцитах. Журнал гепатологии. 2012;56:192–8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[49] McGarry JD, Mannaerts GP, Foster DW. Возможная роль малонил-КоА в регуляции окисления жирных кислот в печени и кетогенеза. Джей Клин Инвест. 1977; 60: 265–70. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[50] McGarry JD, Brown NF. Митохондриальная карнитинпальмитоилтрансферазная система. От концепции к молекулярному анализу. Евр Дж Биохим. 1997; 244:1–14. [PubMed] [Google Scholar]

[51] Sampath H, Miyazaki M, Dobrzyn A, Ntambi JM. Стеароил-КоА-десатураза-1 опосредует пролипогенные эффекты пищевых насыщенных жиров. Дж. Биол. Хим. 2007; 282:2483–93. [PubMed] [Google Scholar]

[52] Lin J, Yang R, Tarr PT, Wu PH, Handschin C, Li S, et al. Гиперлипидемические эффекты пищевых насыщенных жиров, опосредованные коактивацией SREBP PGC-1beta. Клетка. 2005; 120: 261–73. [PubMed] [Google Scholar]

[53] Ntambi JM. Диетическая регуляция экспрессии гена стеароил-КоА-десатуразы 1 в печени мыши. Дж. Биол. Хим. 1992; 267:10925–30. [PubMed] [Google Scholar]

[54] Turner SM, Roy S, Sul HS, Neese RA, Murphy EJ, Samandi W, et al. Диссоциация между потоками жировой ткани и экспрессией липогенных генов у мышей ob/ob. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2007;292: E1101–9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[55] Bassilian S, Ahmed S, Lim SK, Boros LG, Mao CS, Lee WN. Потеря регуляции липогенеза у диабетических крыс Zucker. II. Изменения в синтезе стеаратов и олеатов. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2002; 282:E507–13. [PubMed] [Google Scholar]

[56] Duarte JA, Carvalho F, Pearson M, Horton JD, Browning JD, Jones JG, et al. Диета с высоким содержанием жиров подавляет липогенез de novo и десатурацию, но не элонгацию и синтез триглицеридов у мышей. J липидный рез. 2014;55:2541–53. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[57] Delgado TC, Pinheiro D, Caldeira M, Castro MM, Geraldes CF, Lopez-Larrubia P, et al. Источники накопления печеночных триглицеридов при кормлении с высоким содержанием жиров у здоровых крыс. ЯМР Биомед. 2009;22:310–7. [PubMed] [Google Scholar]

[58] Бруненграбер Д. З., Маккейб Б. Дж., Касумов Т., Александр Дж. К., Чандрамули В., Превис С. Ф. Влияние диеты на моделирование триглицеридов жировой ткани в процессе роста. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2003; 285:E917–25. [PubMed] [Академия Google]

[59] Baumgardner JN, Shankar K, Hennings L, Badger TM, Ronis MJ. Новая модель неалкогольного стеатогепатита у крыс, использующих полное энтеральное питание для перекармливания рациона с высоким содержанием полиненасыщенных жиров. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2008;294:G27–38. [PubMed] [Google Scholar]

Влияние последовательности изокалорийных приемов пищи с различным содержанием белка на биохимические показатели плазмы у свиней

1. Ойке Х., Оиси К., Кобори М. Питательные вещества, часовые гены и хронопитание. Curr Nutr Rep. 2014; 3: 204–212. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

2. Oishi K, Uchida D, Itoh N. Диета с низким содержанием углеводов и высоким содержанием белка влияет на ритмическую экспрессию генов, регулирующих глюконеогенез и циркадные часы, в периферических тканях мыши. Хронобиол Инт. 2012 г.; 29: 799–809. 10.3109/07420528.2012.699127 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Фернстром Дж. Д., Вуртман Р. Дж., Хаммарстром-Виклунд Б., Рэнд В. М., Манро Х. Н., Дэвидсон К. С. Суточные колебания концентрации триптофана, триозина и других нейтральных аминокислот в плазме: влияние потребления белка с пищей. Am J Clin Nutr. 1979; 32: 1912–1922. [PubMed] [Google Scholar]

4. Нассет Э.С., Хилд Ф.П., Кэллоуэй Д.Х., Марген С., Шнееман П. Аминокислоты в плазме крови человека после однократного употребления мяса, масла, сахарозы и виски. Дж Нутр. 1979 год; 109: 621–630. [PubMed] [Google Scholar]

5. Нишиока М., Имаидзуми А., Андо Т., Точикубо О. Ночное влияние энергетического баланса рациона на постпрандиальные профили свободных аминокислот в плазме (PFAA) у взрослых японских мужчин. ПЛОС Один. 2013; 8: e62929 10.1371/journal.pone.0062929 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Репперт С.М., Уивер Д.Р. Координация циркадных ритмов у млекопитающих. Природа. 2002 г.; 418: 935–941. [PubMed] [Google Scholar]

7. Панда С., Хогенеш Дж.Б. Все дело во времени: много тактов, много выходов. Журнал биологических ритмов. 2004 г.; 19: 374–387. [PubMed] [Google Scholar]

8. Oosterman JE, Kalsbeek A, la Fleur SE, Belsham DD. Влияние питательных веществ на циркадные ритмы. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2014: ajpregu 00322 02014. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

9. Фрой О. Метаболизм и циркадные ритмы – последствия ожирения. Эндокринные обзоры. 2010 г.; 31: 1–24. 10.1210/er.2009-0014 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Марчева Б., Рэмси К.М., Бур Э.Д., Кобаяши Ю., Су Х., Ко Ч.Х. и др. Нарушение часовых компонентов CLOCK и BMAL1 приводит к гипоинсулинемии и диабету. Природа. 2010 г. ; 466: 627–631. 10.1038/природа09253 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Турек Ф.В., Джошу С., Косака А., Лин Э., Иванова Г., МакДирмон Э. и др. Ожирение и метаболический синдром у мышей с мутацией циркадных часов. Наука. 2005 г.; 308: 1043–1045. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

12. Арбл Д.М., Басс Дж., Лапоски А.Д., Витатерна М.Х., Турек Ф.В. Циркадный график приема пищи способствует увеличению веса. Ожирение (Серебряная весна). 2009 г.; 17: 2100–2102. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

13. Инь Дж., Дуань Дж.Л., Цуй З.Дж., Цуй З., Рен В.К., Ли Т.Дж. и др. Окислительный стресс, вызванный перекисью водорода, активирует сигналы NF-kB и Nrf2/Keap1 и запускает аутофагию у поросят. RSC Adv., 2015; 5: 15479–15486 [Google Scholar]

14. Xiao H, Wu MM, Shao F, Tan BE, Li TJ, Ren WK и др. Метаболические профили в ответ на добавление составных антимикробных пептидов у поросят, зараженных дезоксиниваленолом. J Anim Sci.2015; 10.2527/jas2014-8229[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Инь Дж., Рен В.К., Дуан Дж.Л., Ву Л., Чен С., Ли Т.Дж. и др. Пищевые добавки с аргинином усиливают экспрессию SLC7A7 и SLC7A1 в кишечнике и облегчают депрессию роста у свиней, зараженных микотоксинами. Аминокислоты, 2014; 46: 883–892 10.1007/s00726-013-1643-5 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Инь Ю.Л., Хуан Р.Л., Ли Т.Дж., Руан З., Се М.Ю., Дэн З.И. и др. Метаболизм аминокислот во внутренних органах молодых свиней с портальным дренажем: влияние пищевых добавок с хитозаном и гороховой шелухой. Аминокислоты 2010. 39: 1581–1587 10.1007/s00726-010-0577-4 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Wu X, Ruan Z, Gao Y, Yin Y, Zhou X, Wang L и др. Пищевые добавки с L-аргинином и N-карбамилглутаматом усиливают рост кишечника и экспрессию белка теплового шока 70 у поросят-отъемышей, получающих рацион на основе кукурузной и соевой муки. Аминокислоты. 2010 г.; 39: 831–839. 10.1007/с00726-010-0538-у [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Wu X, Ruan Z, Gao Y, Wang L, Ruan Z, Liu ZQ и др. Пищевые добавки с L-аргинином или N-карбамилглутаматом усиливают рост кишечника и экспрессию белка теплового шока-70 у поросят-отъемышей, получающих корм на основе кукурузной и соевой муки. Аминокислоты. 2010 г.; 39: 831–9. 10.1007/с00726-010-0538-у [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Инь Ю.Л., Яо К., Лю З., Гонг З., Руан Д., Дэн Б.Е. и др. Добавление L-лейцина в рацион с низким содержанием белка увеличивает синтез белка в тканях у поросят-отъемышей. Аминокислоты. 2010 г.; 39: 1477–1486. 10.1007/s00726-010-0612-5 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Дэн Дж., У С., Бин С., Гонг З., Руан Д., Дэн Б.Е. и др. Соотношение амилозы и амилопектина в рационе и содержание резистентного крахмала влияет на уровень глюкозы в плазме, молочной кислоты, уровень гормонов и синтез белка в тканях внутренних органов. Zeitschrift für Tierphysiologie, Tierernährung und Futtermittelkunde 2010 г.; 94: 220–226 [PubMed] [Google Scholar]

21. Тан З.Р., Инь Л.И., Ньячоти К.М., Хуанг Р.Л., Ли Т.Дж., Ян К.Б. и др. Влияние пищевых добавок хитозана и галакто-маннаноолигосахаридов на параметры сыворотки и экспрессию мРНК инсулиноподобного фактора роста-I у поросят в раннем отъеме. Эндокринология домашних животных 2005 г.; 28: 430–441. [PubMed] [Google Scholar]

22. Ren WK, Yin J, Wu MM, Liu G, Yang G, Xion Y и др. (2014)Аминокислотный профиль сыворотки и благотворное влияние добавок L-аргинина или L-глютамина при колите с декстрансульфатом натрия. ПЛОС ОДИН,2014,9: e88335 10.1371/journal.pone.0088335 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Yin YL, Huang R, Zhong HY (1993) Сравнение илеоректального анастомоза и обычного метода измерения усвояемости подвздошной кишки источников белка и смешанных рационов у растущих свиней. Наука и технология кормов для животных 42: 297–308. [Google Scholar]

24. Хуанг Р.Л., Инь Ю.Л., Ву Г.Ю., Чжан Ю.Г., Ли Т.Дж., Ли Л.Л. и др. (2005) Влияние пищевых добавок с олигохитозаном на усвояемость питательных веществ в подвздошной кишке и продуктивность бройлеров. Птицеводство, 84: 1383–1388. [PubMed] [Академия Google]

25. Репперт С.М., Уивер Д.Р. Координация циркадных ритмов у млекопитающих. Природа. 2002 г.; 418: 935–941. [PubMed] [Google Scholar]

26. Фрой О. Связь между питанием и циркадными ритмами у млекопитающих. Передний нейроэндокринол. 2007 г.; 28: 61–71. [PubMed] [Google Scholar]

27. Ромон М., Эдме Дж.Л., Буленгес С., Лескроарт Дж.Л., Фримат П. Циркадные вариации термогенеза, вызванного диетой. Am J Clin Nutr. 1993 год; 57: 476–480. [PubMed] [Google Scholar]

28. Гроенен М.А., Арчибальд А.Л., Уениши Х., Таггл К.К., Такеучи Ю., Ротшильд М.Ф. и др. Анализ геномов свиней дает представление о демографии и эволюции свиней. Природа. 2012 г.; 491: 393–398. 10.1038/природа11622 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Помар С., Помар Дж., Дюбо Ф., Джоаннопулос Э., Дюссо Дж. П. Влияние ежедневного многофазного кормления на продуктивность животных, состав тела, выделение азота и фосфора и затраты на корма у свиней на доращивании и откорме. Животное. 2014; 8: 704–713. 10.1017/С1751731114000408 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Перейра М.А., Эриксон Э., Макки П., Шранклер К., Раатц С.К., Литл Л.А. и соавт. Частота и качество завтрака могут влиять на гликемию и аппетит у взрослых и детей. Дж Нутр. 2011 г.; 141: 163–168. 10.3945/инн.109.114405 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Блуэ С., Мариотти Ф., Аззоут-Марниш Д., Бос С., Мате В., Том Д. и др. Пониженное потребление энергии крысами, получавшими высокобелковую низкоуглеводную диету, объясняет более низкое отложение жира, но замена макронутриентов объясняет улучшение гликемического контроля. Дж Нутр. 2006 г.; 136: 1849–1854. [PubMed] [Google Scholar]

32. Боуэн Дж., Ноукс М., Тренерри С., Клифтон П.М. Потребление энергии, грелин и холецистокинин после различной предварительной нагрузки углеводами и белками у мужчин с избыточным весом. J Clin Endocrinol Metab. 2006 г.; 91: 1477–1483. [PubMed] [Google Scholar]

33. Ламия К.А., Шторх К.Ф., Вейц К.Дж. Физиологическое значение циркадных часов периферических тканей. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008; 105: 15172–15177. 10.1073/пнас.0806717105 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Lee SY, Sung E, Chang Y. Повышенный уровень гамма-глутамилтрансферазы в сыворотке крови является сильным маркером резистентности к инсулину у детей с ожирением. Int J Endocrinol. 2013; 2013: 578693 10.1155/2013/578693 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Zhou J, Mo Y, Li H, Ran X, Yang W, Li Q и др. Аланинаминотрансфераза связана с неблагоприятным ночным профилем глюкозы в крови у людей с нормальной регуляцией уровня глюкозы. ПЛОС Один. 2013; 8: e56072 10.1371/journal.pone.0056072 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Данлэп Дж. Молекулярные основы циркадных часов. Клетка. 1999 г.; 96: 271–290. [PubMed] [Google Scholar]

37. Риджио О., Мерли М., Пьече У., Ромити А. , Паскуалетти П., Коппола А. и др. Суточная ритмичность вариаций аминокислот в плазме крови у здоровых людей. Недавние прог-мед. 1989; 80: 591–593. [PubMed] [Google Scholar]

38. Цай П.Дж., Ву В.Х., Хуанг ПК. Циркадные колебания концентрации нейтральных и основных аминокислот в плазме у молодых мужчин на обычной тайваньской диете. J Formos Med Assoc. 2000 г.; 99: 151–157. [PubMed] [Google Scholar]

39. Адиби СА. Метаболизм аминокислот с разветвленной цепью при измененном питании. Метаболизм. 1976 год; 25: 1287–1302. [PubMed] [Google Scholar]

40. Yin Y, Yao K, Liu Z, Gong M, Ruan Z, Deng D, et al. Добавление L-лейцина в рацион с низким содержанием белка увеличивает синтез белка в тканях у поросят-отъемышей. Аминокислоты. 2010 г.; 39: 1477–1486. 10.1007/s00726-010-0612-5 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Сурьяван А., Джеяпалан А.С., Орельяна Р.А., Уилсон Ф.А., Нгуен Х.В., Дэвис Т.А. Лейцин стимулирует синтез белка в скелетных мышцах новорожденных свиней, усиливая активацию mTORC1. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2008 г.; 295: E868–875. 10.1152/айпендо.90314.2008 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Ранавана В., Каур Б. Роль белков в секреции инсулина и гликемическом контроле. Adv Food Nutr Res. 2013; 70: 1–47. 10.1016/В978-0-12-416555-7.00001-1 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Raben A, Agerholm-Larsen L, Flint A, Holst JJ, Astrup A. Пища с одинаковой плотностью энергии, но богатая белками, жирами, углеводами или алкоголем по-разному влияет на расход энергии и метаболизм субстрата, но не на аппетит и потребление энергии. Am J Clin Nutr. 2003 г.; 77: 91–100. [PubMed] [Google Scholar]

44. Ахмед М., Наттолл Ф.К., Гэннон М.С., Ламуса Р.Ф. Реакция глюкагона плазмы и азота альфа-аминокислот на различные диеты у нормальных людей. Am J Clin Nutr. 1980; 33: 1917–1924. [PubMed] [Google Scholar]

45. Манро ХН. Факторы, влияющие на потребность в углеводах, жирах и аминокислотах. Nutr Dieta Eur Rev Nutr диета. 1963 год; 5: 298–304. [PubMed] [Google Scholar]

46. Yin FG, Zhang ZZ, Huang J, Yin YL (2010)Скорость переваривания пищевого крахмала влияет на системную циркуляцию аминокислот у поросят-отъемышей. Брит Джей Нутр 103: 1404–1412 гг. 10.1017/S0007114509993321 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. ван Лун Л.Дж., Сарис В.Х., Верхаген Х., Вагенмакерс А.Дж. Инсулиновые реакции плазмы после приема различных смесей аминокислот или белков с углеводами. Am J Clin Nutr. 2000 г.; 72: 96–105. [PubMed] [Google Scholar]

48. Тидген М., Зейтц Х.Дж. Диетический контроль циркадных колебаний инсулина в сыворотке, глюкагона и циклического АМФ в печени. Дж Нутр. 1980 г.; 110: 876–882. [PubMed] [Google Scholar]

49. Peret J, Fousstock S, Chanez M, Bois-Joyeux B, Assan R. Концентрации глюкагона и инсулина в плазме и активность фосфоенолпируваткарбоксикиназы и пируваткиназы в печени во время и после адаптации крыс к диете с высоким содержанием белка. Дж Нутр. 1981 год; 111: 1173–1184.