Дециметроволновая терапия: Дециметроволновая терапия в санатории «Альфа Радон»

ДМВ-физиотерапия: что это такое, как проводится и эффекты от процедуры

Подробности

Категория: Физиотерапия

Создано 23.07.2019 11:16

Детская физиотерапия в Саратове представлена широким спектром проводимых процедур. В данной статье мы расскажем Вам о ДМВ-физиотерапии: что это и для чего применяется.

Дециметровая терапия (ДМВ-терапия для детей) – лечебная методика, основанная на применении электромагнитных волн дециметрового диапазона.

Основной эффект от дециметровой терапии – в усилении обменных процессов, поскольку проникая во внутрь, дециметровые волны активизируют движение белковых цепей, аминокислот, гликолипидов.

Основные лечебные эффекты:

• противовоспалительный;
• секреторный;
• сосудорасширяющий;
• катаболический.

Воздействие ДМВ-терапии проводят локально (местно). При этом активизируется утраченная или нарушенная при болезни функциональная активность.

ДМВ-терапия: показания и противопоказания

Процедура ДМВ-терапии эффективна при заболеваниях:

1. ЛОР-органов (подострых и хронических воспалительных заболеваниях придаточных пазух носа, среднего уха, миндалин)

2. Со стороны опорно-двигательного аппарата (травмы, заболевания суставов и позвоночника)

3. Бронхо-легочной системы (трахеобронхиты (острый, хронический), неосложненная пневмония после нормализации температуры тела, бронхиальная астма)

4. Органов пищеварения (хронический гатродуоденит, неосложненная язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки, дискенезии желчевыводящих путей, хронический гепатит, спастический колит)

5. Почек (хронический гломерулонефрит, хронический пиелонефрит, цистит)

6. Воспалительные заболевания кожи

7. Хирургические показания:

• инфильтраты через 3-4 дня после травмы без признаков нагноения
• травматические артриты
• трудноподвижность в суставах после снятия иммобилизации
• невропатия лицевого нерва

Противопоказания (относятся как к ДМВ-терапии, так и к другим видам физиотерапии для детей):

• гнойные воспалительные процессы
• злокачественные новообразования
• доброкачественных опухоли с тенденцией к росту
• системные заболевания крови
• кровотечения и наклонность к нему
• беременность
• тиреотоксикоз
• кахексия
• недостаточность кровообращения 2-3 стадии
• лихорадочное состояние больного
• эпилепсия
• имплантированный кардиостимулятор и металлические включения в тканях
• острое нарушение мозгового кровообращения
• осложненная язвенная болезнь
• индивидуальная непереносимость

Как проводится дециметровая терапия: особенности ДМВ-терапии у детей

В Первом детском медицинском центре после профильного осмотра у педиатра, физиотерапевт подбирает допустимые показатели рабочей частоты для проведения дециметровой терапии.

В среднем, каждый сеанс длиться 10–20 минут.

ДМВ-терапия у детей имеет следующие особенности:

• процедуры проводят с 2х лет
• используют малую выходную мощность аппарата
• продолжительность воздействия микроволнами зависит от возраста и составляет от 4 до 15 минут на определенный участок тела.
• у детей с осторожностью следует проводить процедуры в местах патологического скопления жидкости и в области костных выступов.

Курс лечения — до 15 процедур, проводятся ежедневно или через день.

Мы работаем без выходных и ждем вас в любое время с 8:00 до 20:00. Необходима предварительная запись.

Записаться к Врачу

Выбрать врача

Электрофорез с эуфиллином

Электрофорез – это физиотерапевтическая процедура, заключающаяся во введении в ткани тела лекарственных…

Необходимость консультации врача-физиотерапевта

Детский физиотерапевт – врач, который не просто назначает, но и подбирает максимально эффективный курс…

Физиотерапия детей грудного возраста

Период грудного возраста длится с 29 дня жизни ребенка  до наступления возраста одного года. В этот период…

Электрофорез при ОРВИ

Физиолечение применяют как для лечения самого ОРВИ, чтобы уменьшить заложенность дыхательных путей, снизить…

Физиотерапия новорожденным

В педиатрии периодом новорожденности считают первые 4 недели жизни (28 дней). Для данного периода жизни…

УВЧ в детской физиотерапии

УВЧ (ультравысокочастотная терапия) — метод детской физиотерапии, при котором применяется воздействие…

Магнитотерапия в детской физиотерапии – эффективность и надежность

Магнитотерапия является одной из популярных процедур в детской физиотерапии. Магнитотерапия — метод лечебного…

Топ-5 наивных мифов о физиотерапии: разбираемся и развенчиваем

Достаточно часто, особенно от людей, которые никак не связаны с медициной, можно услышать, что физиотерапия…

Электрофорез – эффективная и популярная физиотерапевтическая процедура

Электрофорез как метод физиотерапии популярен более 50-ти лет. За это время его основной принцип работы…

Физиотерапия при ЗРР. Нормализация речевого развития у ребенка

Задержка речевого развития – не приговор, и если вовремя обратиться к профильным специалистам, сформировать…

Физиотерапия в педиатрии – помощь каждому ребенку

На разных возрастных этапах ребенку нужна комплексная детская физиотерапия для того, чтобы устранить…

Врач-физиотерапевт – кто это? Какие заболевания лечит физиотерапевт?

Детский врач-физиотерапевт – специалист с дипломом о высшем медицинском образовании, который не просто…

Амплипульстерапия как вид физиолечения заболеваний опорно-двигательной системы

Ответ на вопрос, чтo тaкoe aмплипyльcтepaпия, стоит начать с того, что это один из видов физиотерапии,…

Главные принципы физиопроцедур для детей

После назначения педиатра или узкопрофильных специалистов, детская физиотерапия должна на определенное…

Физиотерапия для детей

— Когда используется физиотерапия: во время острого периода болезни, подострый период или только с реабилитационной…

Первый детский медицинский центр

Здоровье детей – спокойствие родителей!

Поделиться в соцсетях:

Дециметроволновая терапия

Дециметроволновая (ДМВ) терапия − метод лечения электромагнитными колебаниями дециметрового диапазона. Отечественная аппаратура работает на частоте 465 МГц, что соответствует длине волны 65 см. Длина дециметровых волн несоизмерима с толщиной подкожно-жировой клетчатки и мышц, поэтому дециметровые волны по сравнению с сантиметровыми меньше отражаются на границах сред с различной плотностью. Стоячие волны не образуются, и нет опасности перегрева тканей. Дециметровые волны в среднем проникают на глубину 11-13 см. Они оказывают тепловое действие и вызывают повышение температуры, которое в зависимости от состава среды и мощности фактора варьирует в пределах от 2 до 9°С. Повышение температуры сопровождается расширением сосудов, существенным улучшением микроциркуляции, активацией метаболических процессов, нормализацией трофических функций, ускорением рассасывания патологических очагов. Под влиянием электромагнитных волн ДМВ-диапазона снижается периферическое сосудистое сопротивление, улучшается общая гемодинамика, ослабляется спазм гладкой и поперечнополосатой мускулатуры, повышается всасывательная способность синовиальных оболочек, нормализуется проницаемость сосудистых и клеточных мембран.

Дециметровые волны способны вызывать фазовые сдвиги рефлекторной деятельности мозга, а при воздействии на область проекции гипоталамуса − повышать судорожную готовность мозга. Дециметровые волны оказывают также гормоно- и иммунокорригирующес действие. Стимуляция гормонопоэза приводит к уменьшению антитслообразования, увеличению содержания свободных форм гормонов. Для проведения ДМВ-терапии выпускаются стационарные («Волна-2», «Волна-2М») и портативные («Ромашка», «Ранет», «Электроника-Терма») аппараты. Стационарный аппарат «Волна-2» предназначен для дистанционного воздействия. Выходная мощность − 100 Вт регулируется ступенчато. К аппарату придаются 2 излучателя: цилиндрический диаметром 15 см и продолговатый (в форме эллипса) размером 35х16 см. Процедуры дозируются по ощущению тепла. Слаботепловой дозе соответствует мощность 20-40 Вт, тепловой − 40-60 Вт, сильнотепловой − свыше 60 Вт. Зазор − 3-4 см. Портативные аппараты «Ромашка» (ДМВ-15) и «Ранет» (ДМВ-20) предназначены для проведения контактных воздействий на участки небольшой площади. Максимальная выходная мощность − 12-15 Вт, регулируется ступенчато. В комплектах аппарата 4 излучателя: 2 цилиндрических диаметром 40 и 100 мм, внутриполостной (ректальный) и прямоугольный размером 160х120 мм. Воздействие прямоугольным излучателем проводят при зазоре 3 − 4 см. Процедуры дозируют по ощущению тепла. Для цилиндрического излучателя диаметром 40 мм слаботепловой считают мощность 4-6 Вт, тепловой − 6-8 Вт, сильнотепловой 9-12 Вт. Для цилиндрического излучателя диаметром 100 мм, прямоугольного и полостного излучателей слаботепловой является мощность 6-8 Вт, тепловой − 9-12 Вт. Воздействия проводят в слаботепловой и тепловой дозах. Продолжительность воздействия − 5-10 мин на одно поле. Максимальная суммарная продолжительность процедуры до 30 мин. Курс лечения − 10-18 процедур, ежедневно или через день.

Показания: шейный и поясничный остеохондроз с корешковым синдромом, синдромом плече-лопаточного периартроза, симпаталгическим синдромом, синдромом миелопатии; преходящее нарушение мозгового кровообращения, остаточные явления и последствия ишемического инсульта: паркинсонизм, последствия черепно-мозговой травмы, неврит лицевого нерва, вегетативные полиневропатии, вибрационная болезнь, болезнь Рейно, нарушение спинномозгового кровообращения, рассеянный склероз.

Противопоказания: наклонность к кровотечениям, острые воспалительные процессы, беременность, нарушение периферического кровообращения II и III ст., ИБС с частыми приступами стенокардии, нарушение сердечного ритма, наличие металлических и инородных тел в зоне воздействия.

Электростимуляция и терапия дециметровыми волнами улучшают восстановление поврежденных седалищных нервов

[1] Yu KL, Li XM, Tian DH, et al. Механизм действия облучения дециметровыми волнами на восстановление остро поврежденных периферических нервов. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2008;23(12):1089–1091. [Google Scholar]

[2] Yao SQ, Zhang YZ, Tian DH, et al. Влияние дециметровой волны на эндотелиальные клетки и интинальную гиперплазию венозного трансплантата. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2006;21(1):11–14. [Академия Google]

[3] Tian DH, Li XM, Zhang Q, et al. Влияние дециметровой волны на регенерацию двигательной замыкательной пластинки после повреждения нерва. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2008;23(11):976–978. [Google Scholar]

[4] Tian DH, Luo J, Zhang Q, et al. Влияние дециметровой волны и продукта гиалуроната натрия на послеоперационные спайки в сухожилиях сгибателей. Чжунго Сю Фу Чонг Цзянь Вай Кэ За Чжи. 2008;22(11):1318–1322. [PubMed] [Google Scholar]

[5] Tian DH, Zhao M, Wang LM, et al. Эффект усиления регенерации периферических нервов комбинированными физическими факторами. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2007;22(2):100–102. [Академия Google]

[6] Zhang YL, Tian DH, Zhang YZ, et al. Наблюдение за терапевтическими эффектами комплексной реабилитации при полном поражении периферических нервов. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2008;23(11):1001–1003. [Google Scholar]

[7] Tian DH, Zhang YZ, Zhao F, et al. Механизмы действия дециметровых волн на регенерацию периферических нервов. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2005;20(4):261–263. [Google Scholar]

[8] Zhang LX, Tong XJ, Sun XH и др. Экспериментальное исследование низких доз ультракоротких волн, способствующих регенерации нервов после аллотрансплантатов бесклеточных нервов, восстанавливающих щель седалищного нерва у крыс. Селл Мол Нейробиол. 2008; 28(4):501–509.. [PubMed] [Google Scholar]

[9] Sun XH, Che YQ, Tong XJ и др. Улучшение регенерации нервов аллотрансплантатов бесклеточного нерва, засеянных SCs, перекрывающими дефекты седалищного нерва крысы. Селл Мол Нейробиол. 2009;29(3):347–353. [PubMed] [Google Scholar]

[10] Zhang LX, Tong XJ, Yuan XH и др. Влияние низкоэнергетического лазера на арсениде галлия-алюминия с длиной волны 660 нм на регенерацию нервов после аллотрансплантации бесклеточного нерва у крыс. Синапс. 2010;64(2):152–160. [PubMed] [Академия Google]

[11] Тянь Д.Х., Чжао Ф., Чжан Ю.З. Прогресс исследований компрессии периферических нервов. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2007;22(2):85–87. [Google Scholar]

[12] Li GF, Tian DH, Zhang YZ, et al. Реабилитационное лечение при компрессии периферических нервов. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2007;22(2):178–179. [Google Scholar]

[13] Тянь Д.Х. Повреждения периферических нервов и реабилитация. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2007;22(2):99. [Google Scholar]

[14] Yao CH, Chang RL, Chang SL, et al. Электрическая стимуляция улучшает регенерацию периферических нервов у крыс с диабетом, индуцированным стрептозотоцином. J Травма неотложной помощи Surg. 2012;72(1):199–205. [PubMed] [Google Scholar]

[15] Inoue M, Katsumi Y, Itoi M, et al. Электрическая стимуляция игл для акупунктуры постоянным током для регенерации периферических нервов: серия экспериментальных случаев. Иглоукалывание Мед. 2011;29(2):88–93. [PubMed] [Google Scholar]

[16] Inoue M, Hojo T, Nakajima M, et al. Влияние электростимуляции полового нерва на кровоток седалищного нерва у животных. Иглоукалывание Мед. 2008;26(3):145–148. [PubMed] [Google Scholar]

[17] Inoue M, Hojo T, Yano T, et al. Влияние стимуляции поясничной акупунктуры на приток крови к стволу седалищного нерва — предварительное исследование. Иглоукалывание Мед. 2005;23(4):166–170. [PubMed] [Академия Google]

[18] Иноуэ М., Ходжо Т., Яно Т. и др. Электроакупунктура непосредственно на спинномозговые нервы как альтернатива селективной блокаде спинномозговых нервов у пациентов с корешковым ишиасом — когортное исследование. Иглоукалывание Мед. 2005;23(1):27–30. [PubMed] [Google Scholar]

[19] Hausner T, Pajer K, Halat G, et al. Улучшенная скорость регенерации периферических нервов, вызванная экстракорпоральной ударно-волновой терапией у крыс. Опыт Нейрол. 2012;236(2):363–370. [PubMed] [Google Scholar]

[20] Shen CC, Yang YC, Liu BS. Влияние лазерной фототерапии большой площади на регенерацию периферических нервов через большой зазор в канале из биоматериала. J Biomed Mater Res A. 2013;101(1):239–252. [PubMed] [Google Scholar]

[21] Tian DH, Zhang YZ, Mi LX и др. Влияние дециметровой волны на экспрессию иммунологической реакции на белок s-100 в шванновских клетках после повреждения периферических нервов. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2004;19(4):269–271. [Google Scholar]

[22] Sun H, Yang T, Li Q, et al. Дексаметазон и витамин B(12) синергетически способствуют регенерации периферических нервов у крыс, усиливая экспрессию нейротрофического фактора головного мозга. Arch Med Sci. 2012;8(5):924–930. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[23] Liu YR, Liu Q. Метаанализ терапии mNGF при повреждении периферических нервов: систематический обзор. Чин Дж Трауматол. 2012;15(2):86–91. [PubMed] [Google Scholar]

[24] Young C, Miller E, Nicklous DM, et al. Фактор роста нервов и нейротрофин-3 по-разному влияют на функциональное восстановление после повреждения периферических нервов. Рестор Нейрол Нейроски. 2001;18(4):167–175. [PubMed] [Google Scholar]

[25] Патодия С., Райвич Г. Роль факторов транскрипции в регенерации периферических нервов. Фронт Мол Невроски. 2012;5(10):8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[26] Takagi T, Kimura Y, Shibata S, et al. Трубки с устойчивым высвобождением bFGF для регенерации периферических нервов: сравнение с аутотрансплантатом. Plast Reconstr Surg. 2012;130(4):866–876. [PubMed] [Google Scholar]

[27] Saceda J, Isla A, Santiago S, et al. Влияние рекомбинантного гормона роста человека на регенерацию периферических нервов: экспериментальная работа на локтевом нерве крысы. Нейроски Летт. 2011;504(2):146–150. [PubMed] [Google Scholar]

[28] Sorensen J, Haase G, Krarup C, et al. Трансформация гена в шванновские клетки после повреждения периферического нерва: система доставки терапевтических агентов. Энн Нейрол. 1998;43(2):205–211. [PubMed] [Google Scholar]

[29] Тургут М., Каплан С. Влияние мелатонина на регенерацию периферических нервов. Недавний Pat Endocr Metab Immune Drug Discov. 2011;5(2):100–108. [PubMed] [Google Scholar]

[30] Hsiang SW, Lee HC, Tsai FJ, et al. Пуэрарин ускоряет регенерацию периферических нервов. Am J Chin Med. 2011;39(6):1207–1217. [PubMed] [Google Scholar]

[31] Wu D, Raafat A, Pak E, et al. Путь Dicer-микроРНК имеет решающее значение для регенерации периферических нервов и функционального восстановления in vivo и регенеративный аксоногенез in vitro . Опыт Нейрол. 2012;233(1):555–565. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[32] Weidner N, Blesch A, Grill RJ, et al. Гиперсекретирующие фактор роста нервов трансплантаты шванновских клеток увеличивают и направляют рост аксонов спинного мозга и ремиелинизируют аксоны центральной нервной системы фенотипически подходящим образом, который коррелирует с экспрессией L1. J Комп Нейрол. 1999;413(4):495–506. [PubMed] [Google Scholar]

[33] Mandel RJ, Snyder RO, Leff SE. Рекомбинантный аденоассоциированный вирусный вектор, опосредованный переносом гена нейротрофического фактора, полученного из линии глиальных клеток, защищает нигральные дофаминовые нейроны после начала прогрессирующей дегенерации в крысиной модели болезни Паркинсона. Опыт Нейрол. 1999;160(1):205–214. [PubMed] [Google Scholar]

[34] Ahmed MR, Basha SH, Gopinath D, et al. Начальная активация факторов роста и медиаторов воспаления во время регенерации нервов в присутствии коллагеновых трубок, включающих клеточный адгезивный пептид. J Периферийная нервная система. 2005;10(1):17–30. [PubMed] [Google Scholar]

[35] Икеда М., Ока Ю. Взаимосвязь между скоростью нервной проводимости и морфологией волокон во время регенерации периферических нервов. Мозговое поведение. 2012;2(4):382–39.0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[36] Maffei L, Carmignoto G, Perry VH, et al. Шванновские клетки способствуют выживанию ганглиозных клеток сетчатки крысы после перерезки зрительного нерва. Proc Natl Acad Sci USA. 1990; 87 (5): 1855–1859. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[37] Terenghi G. Повреждение и регенерация периферических нервов. Гистол Гистопатол. 1995;10(3):709–718. [PubMed] [Google Scholar]

[38] Yan Y, Sun HH, Hunter DA, et al. Эффективность кратковременного введения FK506 в отношении ускорения регенерации нервов. Нейрореабилитация Нейроремонт. 2012;26(6):570–580. [PubMed] [Академия Google]

[39] Wang Y, Zhang P, Yin X, et al. Характеристики регенерации периферических нервов после повреждения и восстановления второго нерва. Artif Cells Blood Substit Immobil Biotechnol. 2012;40(4):296–302. [PubMed] [Google Scholar]

[40] Avellino AM, Hart D, Dailey AT, et al. Дифференциальные реакции макрофагов в периферической и центральной нервной системе при валлеровской дегенерации аксонов. Опыт Нейрол. 1995;136(2):183–198. [PubMed] [Google Scholar]

[41] Podhajsky RJ, Myers RR. Диффузионно-реакционная модель регенерации нервов. J Neurosci Методы. 1995;60(1-2):79–88. [PubMed] [Google Scholar]

[42] Torigoe K, Tanaka HF, Takahashi A, et al. Основное поведение мигрирующих шванновских клеток при регенерации периферических нервов. Опыт Нейрол. 1996;137(2):301–308. [PubMed] [Google Scholar]

[43] Torigoe K, Hashimoto K, Lundhorg G. Роль мигрирующих шванновских клеток в кондиционирующем эффекте регенерации периферических нервов. Опыт Нейрол. 1999;160(1):99–108. [PubMed] [Google Scholar]

[44] Bryan DJ, Wang KK, Summerhayes C. Миграция шванновских клеток при регенерации периферических нервов. J Reconstr Microsurg. 1999;15(8):591–596. [PubMed] [Google Scholar]

[45] Kater SB, Mills LR. Регуляция поведения конуса роста кальцием. Дж. Нейроски. 1991;11(4):891–899. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[46] Doherty P, Ashton SV, Moore SE, et al. Морфорегуляторная активность NCAM и N-кадгерина может быть объяснена G-белком-зависимой активацией нейрональных каналов Ca2 ⁺ L- и N-типа. Клетка. 1991;67(1):21–33. [PubMed] [Google Scholar]

[47] Ансселин А.Д., Поллард Дж.Д. Иммунопатологические факторы при отторжении аллотрансплантата периферического нерва: количественная оценка инвазии лимфоцитов и экспрессии главного комплекса гистосовместимости. J Neurol Sci. 1990;96(1):75–88. [PubMed] [Google Scholar]

[48] Hoang NS, Sar C, Valmier J, et al. Электроакупунктура на функциональной регенерации периферических нервов у мышей: поведенческое исследование. BMC Комплемент Altern Med. 2012;31(12):141. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[49] Zochodne DW, Cheng C. Нейротрофины и другие факторы роста в регенеративной среде кончиков проксимальных культей нервов. Дж Анат. 2000;196(2):279–283. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[50] Черноусов М.А., Кэри Д.Дж. Молекулы внеклеточного матрикса шванновских клеток и их рецепторы. Гистол Гистопатол. 2000;15(2):593–601. [PubMed] [Google Scholar]

[51] Liu X, Wang J, Dai K. Развитие исследований в области лечения повреждений периферических нервов с помощью нервно-мышечной электростимуляции. Чжунго Сю Фу Чонг Цзянь Вай Кэ За Чжи. 2010;24(5):622–627. [PubMed] [Google Scholar]

[52] Schmidt A. Синдромы компрессии нервов в области локтевого сустава у больных хроническим полиартритом. Обзор литературы. Хандчир Микрочир Пласт Чир. 1993;25(2):75–79. [PubMed] [Google Scholar]

[53] Kerns JM, Fakhouri AJ, Weinrib HP, et al. Электрическая стимуляция регенерации нервов у крыс: ранние эффекты оценивались с помощью вибрирующего зонда и электронной микроскопии. Неврология. 1991;40(1):93–107. [PubMed] [Google Scholar]

[54] Занакис М.Ф. Дифференциальное влияние различных электрических параметров на регенерацию периферических и центральных нервов. Акупунктура Электротер Рез. 1990;15(3-4):185–191. [PubMed] [Google Scholar]

[55] Rajaram A, Chen XB, Schreyer DJ. Стратегический дизайн и новейшие технологии изготовления биоинженерных тканевых каркасов для улучшения регенерации периферических нервов. Tissue Eng, часть B, ред. 2012; 18 (6): 454–467. [PubMed] [Академия Google]

[56] Гупта Р., Ровшан К., Чао Т. и др. Хроническая компрессия нерва вызывает локальную демиелинизацию и ремиелинизацию в крысиной модели синдрома запястного канала. Опыт Нейрол. 2004;187(2):500–508. [PubMed] [Google Scholar]

[57] Mendonca AC, Barbieri CH, Mazzer N. Прямое применение постоянного электрического тока низкой интенсивности усиливает регенерацию периферических нервов у крыс. J Neurosci Методы. 2003;129(2):183–190. [PubMed] [Google Scholar]

[58] Попович М., Бресянац М. , Скетель Дж. Роль шванновских клеток, лишенных аксонов, в периневральной регенерации седалищного нерва. Приложение Нейропатол Нейрохиол. 2000;26(3):221–231. [PubMed] [Академия Google]

[59] Hare GM, Evans PJ, Mackinnon SE, et al. Анализ пешеходной дорожки: долгосрочная оценка восстановления периферического нерва. Plast Reconstr Surg. 1992;89(2):251–258. [PubMed] [Google Scholar]

[60] Badalamente MA, Hurst LC, Paul SB, et al. Усиление нервно-мышечного восстановления после восстановления нервов у приматов. J Hand Surg. 1987;12(2):211–217. [PubMed] [Google Scholar]

[61] Tian DH, Zhang YZ, Zhao F, et al. Влияние декаметровой волны на экспрессию мРНК NGF в регенерированном нерве. Чжунхуа Вули Исюэ юй Канфу Зачжи. 2005;27(3):141–144. [Академия Google]

[62] Shakhbazau A, Kawasoe J, Hoyng SA, et al. Ранние регенеративные эффекты шванновских клеток, трансдуцированных NGF, при восстановлении периферических нервов. Мол Селл Нейроски. 2012;50(1):103–112. [PubMed] [Google Scholar]

[63] Дубовы П. , Свизенска И., Клюсакова И. и др. Молекулы ламинина в обработанных замораживанием сегментах нерва связаны с мигрирующими шванновскими клетками, которые демонстрируют соответствующий интегриновый рецептор альфа6бета1. Глия. 2001;33(1):36–44. [PubMed] [Google Scholar]

[64] Дезава М., Адачи-Усами Э. Роль шванновских клеток в регенерации аксонов ганглиозных клеток сетчатки. Прога Retin Eye Res. 2000;19(2): 171–204. [PubMed] [Google Scholar]

[65] Кобаяси М., Исибаши С., Томимицу Х. и др. Пролиферирующие незрелые шванновские клетки способствуют регенерации нервов после ишемического повреждения периферических нервов. J Neuropathol Exp Neurol. 2012;71(6):511–519. [PubMed] [Google Scholar]

[66] McGrath AM, Novikova LN, Novikov LN, et al. Пептидный гидрогель BDTM PuraMatrixTM, засеянный шванновскими клетками, для регенерации периферических нервов. Мозг Рес Бык. 2010;83(5):207–213. [PubMed] [Академия Google]

[67] Matsuse D, Kitada M, Kohama M, et al. Мезенхимальные стромальные клетки, полученные из пуповины человека, дифференцируются в функциональные шванновские клетки, поддерживающие регенерацию периферических нервов. J Neuropathol Exp Neurol. 2010;69(9):973–985. [PubMed] [Google Scholar]

[68] Liu H, Kim Y, Chattopadhyay S, et al. Ингибирование матриксной металлопротеиназы увеличивает скорость регенерации нервов in vivo путем стимуляции дедифференцировки и митоза поддерживающих шванновских клеток. J Neuropathol Exp Neurol. 2010;69(4): 386–395. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[69] Torigoe K, Hashimoto K, Lundborg G. Роль мигрирующих шванновских клеток в кондиционирующем эффекте регенерации периферических нервов. Опыт Нейрол. 1999;160(1):99–108. [PubMed] [Google Scholar]

[70] Bryan DJ, Wang KK, Summerhayes C. Миграция шванновских клеток при регенерации периферических нервов. J Reconstr Microsurg. 1999;15(8):591–596. [PubMed] [Google Scholar]

[71] Блоттнер Д., Баумгартен Х.Г. Нейротрофия и регенерация in vivo . Acta Anat (Базель) 1994;150(4):235–245. [PubMed] [Google Scholar]

[72] Bajrovic F, Bresjanac M, Sketelj J. Долгосрочные эффекты лишения клеточной поддержки в дистальной культе на регенерацию периферических нервов. J Neurosci Res. 1994;39(1):23–30. [PubMed] [Google Scholar]

[73] Miyauchi A, Kanje M, Danielsen N, et al. Роль макрофагов в стимуляции и регенерации чувствительных нервов транспозированной грануляционной тканью и временные аспекты ответа. Scand J Plast Reconstr Surg Hand Surg. 1997;31(1):17–23. [PubMed] [Google Scholar]

[74] Krieglstein K, Richter S, Farkas L, et al. Снижение эндогенных трансформирующих факторов роста бета предотвращает онтогенетическую гибель нейронов. Нат Нейроски. 2000;3(11):1085–1090. [PubMed] [Google Scholar]

[75] Einheber S, Hannocks MJ, Metz CN, et al. Трансформирующий фактор роста-бета 1 регулирует взаимодействие аксонов и шванновских клеток. Джей Селл Биол. 1995;129(2):443–458. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

[76] Nath RK, Kwon B, Mackinnon SE, et al. Антитело к бета-трансформирующему фактору роста снижает выработку коллагена в поврежденном периферическом нерве. Plast Reconstr Surg. 1998;102(4):1100–1108. [PubMed] [Google Scholar]

[77] Министерство науки и технологий Китайской Народной Республики. Рекомендации по уходу и использованию лабораторных животных. 2006 г., 30 сентября; [Google Scholar]

[78] Mackinnon SE, Dellon AL, Hudson AR, et al. Модель приматов с хронической компрессией нервов. J Reconstr Mcrosurg. 1985;1(3):185–195. [PubMed] [Google Scholar]

[79] Hare GM, Evans PJ, Mackinnon SE, et al. Анализ пешеходной дорожки: использование индивидуальных параметров следа. Энн Пласт Сург. 1993;30(2):147–153. [PubMed] [Google Scholar]

Электростимуляция и терапия дециметровыми волнами улучшают восстановление поврежденных седалищных нервов

. 2013 25 июля; 8(21):1974-84.

doi: 10.3969/j.issn.1673-5374.2013.21.006.

Фэн Чжао ¹ , Вэй Хэ ² , Инцзе Чжан ² , Дэху Тянь ² , Хунфан Чжао ² , Куньлунь Юй ² , Цзянбо Бай ²

Принадлежности

• ¹ Отделение ортопедии, Первая больница Хэбэйского медицинского университета, Шицзячжуан 050031, провинция Хэбэй, Китай.
• ² Отделение хирургии кисти, Третья больница Хэбэйского медицинского университета, Шицзячжуан 050051, провинция Хэбэй, Китай.

• PMID: 25206506
• PMCID: PMC4145900
• DOI: 10.3969/j.issn.1673-5374.2013.21.006

Бесплатная статья ЧВК

Фэн Чжао и др. Нейронная регенерация Res. 2013 .

Бесплатная статья ЧВК

. 2013 25 июля; 8(21):1974-84.

doi: 10.3969/j.issn.1673-5374.2013.21.006.

Авторы

Фэн Чжао ¹ , Вэй Хэ ² , Инцзе Чжан ² , Дэху Тянь ² , Хунфан Чжао ² , Куньлунь Юй ² , Цзянбо Бай ²

Принадлежности

• ¹ Отделение ортопедии, Первая больница Хэбэйского медицинского университета, Шицзячжуан 050031, провинция Хэбэй, Китай.
• ² Отделение хирургии кисти, Третья больница Хэбэйского медицинского университета, Шицзячжуан 050051, провинция Хэбэй, Китай.

• PMID: 25206506
• PMCID: PMC4145900
• DOI: 10.3969/j.issn.1673-5374.2013.21.006

Абстрактный

Было показано, что медикаментозное лечение, электростимуляция и терапия дециметровыми волнами способствуют восстановлению и регенерации периферических нервов в месте повреждения. Это исследование подготовило модель компрессии седалищного нерва Маккиннона у крыс. Электростимуляцию проводили сразу после нейролиза, а дециметровое облучение проводили через 1 и 12 недель после операции. Гистологическое исследование показало, что интраоперационная электрическая стимуляция и терапия дециметровыми волнами могут улучшить местное кровообращение в восстановленных участках, облегчить гипоксию сдавленных нервов и уменьшить адгезию сдавленных нервов, тем самым уменьшая образование новых захватов и усиливая регенерацию сдавленных нервов за счет улучшения микроокружения. для регенерации. Результаты иммуногистохимического окрашивания показали, что интраоперационная электрическая стимуляция и дециметровая волна могут способствовать экспрессии белка S-100. Скорость и амплитуда проводимости двигательного нерва, количество и диаметр миелинизированных нервных волокон и седалищный функциональный индекс были значительно увеличены у обработанных крыс. Эти результаты подтвердили, что интраоперационная электростимуляция и дециметрово-волновая терапия способствовали регенерации и восстановлению функций компрессированных нервов.

Ключевые слова: Шванновские клетки; электрическая стимуляция; функциональное восстановление; нервная регенерация; нейрорегенерация; повреждение периферических нервов; физиотерапия; компрессия седалищного нерва.

Заявление о конфликте интересов

gov/pub-one»> Конфликт интересов: не объявлено.

Цифры

Рисунок 1

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 1

Влияние электростимуляции и дециметровых волн на морфологию седалищных нервов…

фигура 1

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на морфологию седалищных нервов у крыс с компрессией седалищного нерва на 2^{-й и} -й неделе после операции (окраска гематоксилин-эозином, × 400). Многие воспалительные клетки и вкрапления многоядерных гигантских клеток инфильтрировали вокруг нервов в контрольной группе (А). Воспалительные клетки были ограничены поверхностным слоем эпиневрия в группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (В). Воспалительные клетки инфильтрировали ткани, окружающие нерв, в обеих группах.

Рисунок 2

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 2

Влияние электростимуляции и дециметровых волн на морфологию седалищных нервов…

фигура 2

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на морфологию седалищных нервов у крыс с компрессией седалищного нерва в 4 ^-я -я неделя после операции (окраска гематоксилин-эозином, × 400). Воспалительные клетки все еще накапливались в контрольной группе (А). Воспалительные клетки редко наблюдались в группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (B). Воспалительные реакции значительно уменьшились, а отек миелина начал исчезать в обеих группах.

Рисунок 3

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 3

Влияние электростимуляции и дециметровых волн на морфологию седалищных нервов…

Рисунок 3

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на морфологию седалищных нервов у крыс с компрессией седалищного нерва на 89097-й -й неделе после операции (окраска гематоксилин-эозином, × 200). Отек аксонов уменьшался, несмотря на усиление демиелинизации в контрольной группе (А). Отек аксонов практически исчез, отслоение миелиновых оболочек постепенно уменьшалось в группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (Б).

Рисунок 4

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 4

Влияние электростимуляции и дециметровых волн на морфологию седалищных нервов…

Рисунок 4

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на морфологию седалищных нервов у крыс с компрессией седалищного нерва в 12 ^-я -я неделя после операции (окрашивание гематоксилин-эозином, × 200). Поверхности нервов были шероховатыми, и в контрольной группе (А) наблюдалось много спаек. Поверхности нервов были гладкими и не имели спаек с окружающими тканями или имели лишь незначительные нитевидные сращения в группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (В).

Рисунок 5

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 5

Влияние электростимуляции и дециметровых волн на ультраструктуру седалищных нервов…

Рисунок 5

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на ультраструктуру седалищного нерва у крыс с компрессией седалищного нерва на 2^-й -й неделе после операции (трансмиссионная электронная микроскопия, × 15 000). Клеточная мембрана эпиневрия миелиновой оболочки отслоилась от аксона, миелиновая оболочка была неравномерно набухшей, а митохондрии выглядели вакуолярно некротизированными и дезинтегрированными в контрольной группе (А). Новый зачаток аксона, который был инкапсулирован эпиневрием, присутствовал в проксимальном конце захваченного сегмента в группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (B).

Рисунок 6

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 6

Влияние электростимуляции и дециметровых волн на ультраструктуру седалищных нервов…

Рисунок 6

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на ультраструктуру седалищного нерва у крыс с компрессией седалищного нерва на уровне 4 ^-я -я неделя после операции (трансмиссионная электронная микроскопия, × 30 000). В контрольной группе (А) неравномерно расположенных миелинизированных волокон было немного. В группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (В) миелиновая оболочка была относительно толстой, а регенерированный аксон имел нормальный вид.

Рисунок 7

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 7

Влияние электростимуляции и дециметровых волн на ультраструктуру седалищных нервов…

Рисунок 7

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на ультраструктуру седалищного нерва у крыс с компрессией седалищного нерва на 8 ^-й -й неделе после операции (трансмиссионная электронная микроскопия, × 30 000). В контрольной группе (А) было большое количество упорядоченно расположенных миелинизированных волокон малого диаметра. В группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (В) регенерированные миелинизированные волокна располагались упорядоченно. Фасцикулярная структура была тонкой, эндоневрий хорошо развит.

Рисунок 8

Эффекты электростимуляции и…

Рисунок 8

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на экспрессию S-100 (стрелки) в сжатом…

Рисунок 8

Влияние электростимуляции и дециметровой волны на экспрессию S-100 (стрелки) в сдавленном седалищном нерве (иммуногистохимия, × 400). В контрольной группе (А) нервные волокна в проксимальном конце ущемленного сегмента были обернуты нормальными шванновскими клетками. В группе интраоперационной электростимуляции и дециметровых волн (В) нервные волокна были обернуты шванновскими клетками, а количество положительных частиц в шванновских клетках со временем увеличилось.

Рисунок 9

Морфология седалищных нервов…

Рисунок 9

Морфология седалищных нервов нормальных крыс (А) и модели Маккиннона (В).

Рисунок 9

Морфология седалищных нервов нормальных крыс (А) и модели Маккиннона (В).

Рисунок 10

Электрофизиологические показатели нормальных крыс…

Рисунок 10

Электрофизиологические показатели нормальных крыс (А) и модели Маккиннона (В). Скриншот…

Рисунок 10

Электрофизиологические показатели нормальных крыс (А) и модели Маккиннона (Б). Скриншот системы регистрации электрофизиологии. Слева: электрофизиологические волны; справа: обнаруженные данные.

См. это изображение и информацию об авторских правах в PMC

Похожие статьи

• Биоразлагаемая магниевая проволока способствует регенерации сдавленных седалищных нервов.

  Ли Б.Х., Ян К., Ван Х. Ли Б.Х. и др. Нейронная регенерация Res. 2016 Дек;11(12):2012-2017. дои: 10.4103/1673-5374.197146. Нейронная регенерация Res. 2016. PMID: 28197200 Бесплатная статья ЧВК.

• [Экспериментальное исследование регенерации повреждения седалищного нерва с помощью физиотерапии].

  Чжао Дж, Ю Х, Сюй Ю, Бай Ю. Чжао Дж. и др. Чжунго Сю Фу Чонг Цзянь Вай Кэ За Чжи. 2011 Январь; 25 (1): 107-11. Чжунго Сю Фу Чонг Цзянь Вай Кэ За Чжи. 2011. PMID: 21351623 Китайский.

• ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ВОССТАНОВЛЕНИЯ ПОВРЕЖДЕНИЯ СЕДАЛИЩНОГО НЕРВА ШВАНОПОДОБНЫМИ КЛЕТКАМИ, ПОЛУЧЕННЫМИ ИЗ МЕЗЕНХИМАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ПУПОНОВОЙ КРОВИ.

  Ван Х, Ван С, Сяо Ю. Ван Х и др. Чжунго Сю Фу Чонг Цзянь Вай Кэ За Чжи. 2015 фев; 29 (2): 213-20. Чжунго Сю Фу Чонг Цзянь Вай Кэ За Чжи. 2015. PMID: 26455153 Китайский.

• Острая перемежающаяся гипоксия усиливает регенерацию восстановленных хирургическим путем периферических нервов подобно электрической стимуляции.

  Nadeau JR, Arnold BM, Johnston JM, Muir GD, Verge VMK. Nadeau JR и соавт. Опыт Нейрол. 2021 июль; 341:113671. doi: 10.1016/j.expneurol.2021.113671. Epub 2021 5 марта. Опыт Нейрол. 2021. PMID: 33684407

• Влияние комбинации высокочастотной повторяющейся магнитной стимуляции и нейротропина на регенерацию поврежденного седалищного нерва у крыс.

  Чен Дж., Чжоу С.Дж., Сунь Р.Б. Чен Дж. и др. Нейронная регенерация Res. 2020 янв; 15 (1): 145-151. дои: 10.4103/1673-5374.264461. Нейронная регенерация Res. 2020. PMID: 31535663 Бесплатная статья ЧВК.

Посмотреть все похожие статьи

Цитируется

• Роль коротковолновой и микроволновой диатермии в периферической нейропатии.

  Fu T, Lineaweaver WC, Zhang F, Zhang J. Фу Т и др. J Int Med Res. 2019 авг; 47 (8): 3569-3579. дои: 10.1177/0300060519854905. Epub 2019 15 июля. J Int Med Res. 2019. PMID: 31304815 Бесплатная статья ЧВК. Обзор.

• Электроакупунктура и прижигание способствуют регенерации поврежденного седалищного нерва за счет пролиферации шванновских клеток и секреции фактора роста нервов.

  Ху Л.Н., Тянь Дж.С., Гао В., Чжу Дж., Моу Ф.Ф., Е Х.С., Лю Ю.П., Лу П.П., Шао С.Дж., Го ХД. Ху Л.Н. и соавт. Нейронная регенерация Res. 2018 март; 13(3):477-483. дои: 10.4103/1673-5374.228731. Нейронная регенерация Res. 2018. PMID: 29623933 Бесплатная статья ЧВК.

• Биологический метод перекрытия рукава с небольшим зазором при повреждении периферических нервов: закон регенерации нервных волокон в кондуите.

  Zhang PX, Li-Ya A, Kou YH, Yin XF, Xue F, Han N, Wang TB, Jiang BG. Чжан PX и др. Нейронная регенерация Res. 2015 Январь; 10 (1): 71-8. дои: 10.4103/1673-5374.150709. Нейронная регенерация Res. 2015. PMID: 25788923 Бесплатная статья ЧВК.

использованная литература

1. 1. Ю К.Л., Ли С.М., Тянь Д.Х. и др. Механизм действия облучения дециметровыми волнами на восстановление остро поврежденных периферических нервов. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2008;23(12):1089–1091.
2. 1. Яо С.К., Чжан Ю.З., Тянь Д.Х. и др. Влияние дециметровой волны на эндотелиальные клетки и интинальную гиперплазию венозного трансплантата. Чжунго Канфу Исюэ Цзачжи. 2006;21(1):11–14.
3. 1. Тянь Д.